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이상엽,김윤진,김형회,손한철,전태용,심문섭 대한비만학회 2002 The Korean journal of obesity Vol.11 No.2
연구배경 : 최근 식욕조절인자로 관심이 집중되고 있는 그렐린(ghrelin)은 식사 전후로 독한 일중변동을 보인다. 하지만, 지금까지는 실험적으로 일정한 열량의 표준 음식을 일정한 식사시간에 공급한 이후 그렐린의 농도 변화를 관찰하였다. 저자 등은 평소 아침 식사시간이 각기 다른 사람들에서 아침 식사 전후의 혈장 그렐린 농도 변화를 관찰하여 향후 외래 환경에서도 그렐린 관련 연구가 가능하도록 기초 자료를 제공하고자 하였다. 방법 : 연구에 대한 설명을 듣고 동의한 23.4 ~ 35.5세 사이의 비교적 건강한 동양인 남자 4명을 대상으로 하였다. 신체 계측을 한 후 이중 에너지 방사선 측정법 (Lunar prodigy, GE medical systems, Waukesha, Wisconsis, USA, 이하 DEXA)으로 체지방을 측정하였다. 연구 대상자 모두 평소 아침 식사시간이 일정하였지만 연구 시작 2주전부터 아침 식사시간을 엄격히 고정하도록 하였다. 스트레스가 없는 상태에서 아침 식사를 하지 않는 지원자는 오전 6시 30분부터, 나머지는 아침식사 시간 1시간 전부터 1시간 간격으로 점심 식사 전인 오전 11시 30분까지 채혈하였다. 각각의 검체로 부터 혈장 그렐린은 상업적인 방사선면역측정법 (Phoenix Pharmaceuticals, Inc., Belmont, CA)으로 측정되었다. 랩틴은 Ⅰ-125 표지 랩틴을 이용한 이중항체 방사선면역측정법으로, 혈장 인슐린은 항체 부착관을 이용한 방사선면역측정법으로, 혈당은 포도당산화 효소법에 의해 Synchron LX 20 (Beckman Coulter, Inc, Fullerton, USA)으로 측정하였다. 결과 : 연구 대상자의 체질량지수는 22.9 ~ 27.1 kg/㎡이었고, 허리둘레는 80.3 ~ 93.3 cm이었다. DEXA로 측정한 결과 전체 체지방과 체부지방 비율은 각각 27.1 ~ 31.8%와 32.7 ~ 32.4%이었다. 아침 식사를 하지 않는 자를 제외한 나머지 연구 대상자의 아침 식사 직전의 식후 2시간의 혈장 그렐린 농도는 각각 113.0 ~ 800.0 pg/mL, 78.3 ~ 553.0 pg/mL이었고 랩틴 농도는 각각 4.9 ~ 5.1 ng/mL, 4.4 ~ 4.7 ng/mL 이었다. 혈장 그렐린 랩틴 농도는 아침 식사 직전에 비해 식사 2시간 후 각각 7.2 ~ 30.9%와 7.8 ~ 10.2%감소되었다. 아침식사를 하지 않는 대상자의 경우 인슐린과 혈당치가 변화가 없음에도 불구하고 혈장 그렐린 농도는 오전 7시 30분에 가장 낮았다. 그 외 연구 대상자에서는 각기 다른 시간이더라도 아침 식사 2시간 후의 혈장 그렐린 농도가 가장 낮았다. 결론 : 평소 아침 식사시간이 다른 사람들에게서 혈장 그렐린 농도는 각기 다른 아침 식사 2 시간 후에 가장 낮았다. 아침 식사를 하지 않는 경우에는 혈장 그렐린 농도가 오전 7시 30분에 가장 낮았다. Background : Recently, the particular interest is on ghrelin, the dietary control factor among many scientists and it a toxic diurnal variations has been demonstrated before and after meal. However, the experimental approach has been only to see the changes in the concentration of ghrelin after intake of meals standardized with fixed calories at scheduled meal hours. the authors of this particular experiment have tried to observe and record the changes in concentrations of plasma ghrelin of persons with different breakfast hours. This might help in providing a basis for further possible studies in outpatient setting. Method : A group of four relatively healthy males whose ages between 23.4 and 35.5 with prior agreements were selected for this study. After body measurements, body lipid status was measured based on Lunar prodigy (GE medical systems, Waukesha, Wisconsin, USA) which is also referred to as DEXA. All of the selected persons had somewhat fixed breakfast time; however, they were asked to strictly keep their breakfast time fixed and steady starting two weeks before the beginning of experiment. The bloods of those who skip their breakfast without any particular stress were sampled at 6:30 AM, whereas the rest had different schedule, whose bloods were sampled every hour starting 1 hour before the first meal of the day till just before lunch (11:30 Am). From each blood sample, the level of plasma ghrelin was measured using the commercial radioimmune assay (Phoenix Pharmaceuticals, Inc., Belmont, CA). Leptin was measured with double antibody radioimmune assay using Ⅰ-125 labelled leptin, plasma insulin with radioimmune assay using antibody attachment tube, and blood sugar with Synchron LX20 (Beckman Coulter, Inc, Fullerton, USA) using glucosylation enzyme method. Result : The body mass index of the volunteers was 22.9 ~ 27.1 kg/㎡, with 80.3 ~ 93.3 cm waist circumference. Based on measurements by DEXA, the rates of total body lipid and trunk lipid were each 27.1 ~ 31.8% and 32.7 ~ 32.4%, respectively. The concentrations of plasma ghrelin of those who consume their breakfast before and 2 hour after their breakfast are 113.0 ~ 800.0 pg/mL and 78.3 ~ 553.0 pg/mL. The concentrations of leptin are 4.9 ~ 5.1 ng/mL and 4.4 ~ 4.7 ng/mL. Compared to the concentration of plasma ghrelin and of leptin recorded just before breakfast, it showed 7.2 ~ 30.9% and 7.8 ~ 10.2% decrease, respectively, 2 hours after breakfast. For those who skip their breakfast, the plasma concentration of ghrelin was recorded the lowest at 7:30 AM, even though there was no change in insulin and blood sugar. The rest of the subjects had their lowest plasma ghrelin concentration at 2 hours after breakfast, despite their different meal schedule. Conclusion : The persons with different breakfast hours had their lowest plasma concentration of ghrelin at 2 hours after breakfast. In contrast, the persons who skip their breakfast had their lowest concentration at 7: 30 AM.
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검정금파리의 변태기에 따른 엑디스테로이드와 난세포성숙에 미치는 엑디스테로이드의 효과
이종진 한국응용곤충학회 1992 한국응용곤충학회지 Vol.31 No.4
검정금파리의 변태에 따른 엑디스테로이드를 Radioimmunoassay법으로 측정하고, 난세포성숙에 미치는 엑디스테로이드의 효과를 조사하여 얻을 결과는 다음과 같다. 산락직후 존재하였던 난내 엑디스테로이드는 발생과정 중 감소하다가 부화 직전 다시 증가하였으며, 유충기와 용기의 성장 변태시 엑디스테로이드함량의 변화를 보면 유충-유충과 유충-용으로의 탈피시에 일시적인 증가현상을 나타냈다. 특히 용화 후 48시간에 높은 엑디스테로이드의 농도를 보였는데 이는 큐티클분비와 경화작용과 밀접한 관계가 있는 것으로 생각된다. 성충기에서는 수컷의 경우 엑디스테로이드가 거의 검출 되지 않은 반면, 암컷에서는 단백질원 섭식 후 96시간에 최고의 함량을 나타내어 난성숙도와 일치하는 변화를 보였다. 엑디스테로이드 처리와 난성숙도와의 관계를 보면, 1g 처리군은 대조군에서와 같은 성숙도를 나타내 차이를 보이지 않았으나, 5g처리군에서는 대조군에서 보다 12시간 빠르게 난세포성숙이 완료되어, 엑디스테로이드 처리시 임계농도 이상에서는 난세포조기성숙에 직접적인 영향을 미치는 것으로 나타났다. The ecdysteroid titers of representive developmental stages of the blackblow fly, Phormia regina, were determined by radioimmunoassay and the effect of ecdysteroid on the oocyte maturation was investigated. Prior to every molts ecdysteroid levels began to increase sharply, suggesting ecdysteroid was the major component for egg-larval, larval-larval, and larval-pupal transformation. A difference in the levels of ecdysteroid between male and female was observed during adult life span. Following the protein meal, ecdysteroid in the females increased rapidly to a maximum at 96 hr of age when terminal oocyte fully matured. Effect of ecdysteroid on oocyte development was determined for control and ecdysone-treated female flies after the liver-feeding. The growth of oocyte in the flies treated by g of ecdysone, along with the control flies, was not facilitated. When the flies treated by 5 g of ecdysone, however, duration of oocyte maturation was shorter than those of other two groups. This can be suggested that oocyte development in P. regina is due to the critical level of ecdysone.
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