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      (The)effects of fluid flow on the voltage-dependent calcium channels in rat vascular smooth muscle cells: fluid flow as a shear stress and a potential source of artifacts during the patch-clamp studies

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      https://www.riss.kr/link?id=T11360424

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      국문 초록 (Abstract)

      이 연구에서 본 연구자는 분리된 rat 혈관 평활근 세포에서 nystatin perforated patch-clamp 방법을 이용하여 용액의 흐름에 의한 L-type voltage-dependent C^(a2)+ channel (VDCC_(L))의 변화에 대하여 실험하였다. 또한 용액의 흐름에 따른 liquid (bathing solution)-metal (Ag/AgCl ground electrode) junction potential의 영향에 대해 관찰하였다. I-clamp mode에서 Junction potential을 측정하였고, 다양한 flow 속도가 Junction potential에 미치는 효과를 관찰하였다. Pipette solution과 bath solution 사이의 Junction potential 변화를 막기 위해 3M-KCl을 pipette solution으로 사용하였다. Flow의 속도를 0-10ml/min로 실험한 결과 junction potential이 약 5 mV까지 증가하는 것을 관찰하였다. 이러한 변화는 Ground electrode와 bathing solution 사이에 3M-KCl agar bridge를 사용하면 차단되는 것으로 보아 bathing solution 과 ground electrode 사이의 liquid-metal junction potential 변화에 의한 것임을 알 수 있었다.
      위에서 관찰한 변화와 함께 fluid flow는 junction potential의 VDCC_(L) current의 증가를 초래하였는데, 3M-KCl agar bridge를 사용하면 전류-전압 관계의 right-shift 변화없이 VDCC_(L) current의 증가만 관찰되었다. 이러한 결과는 patch-clamp실험에서 bath에 fluid flow가 liquid와 metal junction 사이의 잘못된 voltage shift를 가져올 수 있으며, 이것을 방지하기 위해 ground electrode로 3M-KCl Agar bridge를 사용해야 함을 시사한다. 또한, Fluid flow에 의한 shear stress는 혈관 평활근에 가해지는 중요한 기계적 자극이며, 또한 전압 의존성 칼슘의 채널 활성을 조절함으로써 myogenic tone등에 영향을 미침을 제안한다.
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      이 연구에서 본 연구자는 분리된 rat 혈관 평활근 세포에서 nystatin perforated patch-clamp 방법을 이용하여 용액의 흐름에 의한 L-type voltage-dependent C^(a2)+ channel (VDCC_(L))의 변화에 대하여 실험하였다....

      이 연구에서 본 연구자는 분리된 rat 혈관 평활근 세포에서 nystatin perforated patch-clamp 방법을 이용하여 용액의 흐름에 의한 L-type voltage-dependent C^(a2)+ channel (VDCC_(L))의 변화에 대하여 실험하였다. 또한 용액의 흐름에 따른 liquid (bathing solution)-metal (Ag/AgCl ground electrode) junction potential의 영향에 대해 관찰하였다. I-clamp mode에서 Junction potential을 측정하였고, 다양한 flow 속도가 Junction potential에 미치는 효과를 관찰하였다. Pipette solution과 bath solution 사이의 Junction potential 변화를 막기 위해 3M-KCl을 pipette solution으로 사용하였다. Flow의 속도를 0-10ml/min로 실험한 결과 junction potential이 약 5 mV까지 증가하는 것을 관찰하였다. 이러한 변화는 Ground electrode와 bathing solution 사이에 3M-KCl agar bridge를 사용하면 차단되는 것으로 보아 bathing solution 과 ground electrode 사이의 liquid-metal junction potential 변화에 의한 것임을 알 수 있었다.
      위에서 관찰한 변화와 함께 fluid flow는 junction potential의 VDCC_(L) current의 증가를 초래하였는데, 3M-KCl agar bridge를 사용하면 전류-전압 관계의 right-shift 변화없이 VDCC_(L) current의 증가만 관찰되었다. 이러한 결과는 patch-clamp실험에서 bath에 fluid flow가 liquid와 metal junction 사이의 잘못된 voltage shift를 가져올 수 있으며, 이것을 방지하기 위해 ground electrode로 3M-KCl Agar bridge를 사용해야 함을 시사한다. 또한, Fluid flow에 의한 shear stress는 혈관 평활근에 가해지는 중요한 기계적 자극이며, 또한 전압 의존성 칼슘의 채널 활성을 조절함으로써 myogenic tone등에 영향을 미침을 제안한다.

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      다국어 초록 (Multilingual Abstract)

      I examined the effects of fluid flow on L-type voltage-dependent Ca^(2+) channel (VDCC_(L)) currents in rat vascular myocytes using the nystatin perforated patch-clamp technique. The effect of fluid flow on the liquid (bathing solution)–metal (Ag/AgCl ground electrode) junction potential was also studied. With a fluid flow of 0–10 ml/min, changes in the junction potential of up to 5 mV were observed in proportion to the flow rate. Accordingly, fluid flow shifted the current-voltage (I–V) relationship of the recorded VDCC_(L) currents in a positive direction. In addition to these shifts, fluid flow also increased the peak VDCC_(L) current, suggesting some modulatory role for fluid flow in VDCC_(L) currents. The use of a 3 M KCl agar-bridge between the ground electrode and bathing solution abnegated the potential shifts, and fluid flow increased the VDCC_(L) currents in a voltage-independent manner. These results suggest that the bathing fluid flow can be both a source of erroneous voltage shift between liquid and metal junctions in the patch-clamp configuration and an important shear stress for the cells. The facilitation of VDCC_(L) currents by fluid flow in vascular myocytes may contribute to the myogenic contraction of blood vessels. The mechanism by which fluid flow causes the voltage shift is vigorously discussed.
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      I examined the effects of fluid flow on L-type voltage-dependent Ca^(2+) channel (VDCC_(L)) currents in rat vascular myocytes using the nystatin perforated patch-clamp technique. The effect of fluid flow on the liquid (bathing solution)–metal (A...

      I examined the effects of fluid flow on L-type voltage-dependent Ca^(2+) channel (VDCC_(L)) currents in rat vascular myocytes using the nystatin perforated patch-clamp technique. The effect of fluid flow on the liquid (bathing solution)–metal (Ag/AgCl ground electrode) junction potential was also studied. With a fluid flow of 0–10 ml/min, changes in the junction potential of up to 5 mV were observed in proportion to the flow rate. Accordingly, fluid flow shifted the current-voltage (I–V) relationship of the recorded VDCC_(L) currents in a positive direction. In addition to these shifts, fluid flow also increased the peak VDCC_(L) current, suggesting some modulatory role for fluid flow in VDCC_(L) currents. The use of a 3 M KCl agar-bridge between the ground electrode and bathing solution abnegated the potential shifts, and fluid flow increased the VDCC_(L) currents in a voltage-independent manner. These results suggest that the bathing fluid flow can be both a source of erroneous voltage shift between liquid and metal junctions in the patch-clamp configuration and an important shear stress for the cells. The facilitation of VDCC_(L) currents by fluid flow in vascular myocytes may contribute to the myogenic contraction of blood vessels. The mechanism by which fluid flow causes the voltage shift is vigorously discussed.

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      목차 (Table of Contents)

      • Ⅰ. Introduction = 1
      • Ⅱ. Materials & Methods = 4
      • 1. Animals and cell preparation = 4
      • 2. Solutions and Chemicals = 5
      • 3. Electrophysiological recordings and application of fluid flow = 6
      • Ⅰ. Introduction = 1
      • Ⅱ. Materials & Methods = 4
      • 1. Animals and cell preparation = 4
      • 2. Solutions and Chemicals = 5
      • 3. Electrophysiological recordings and application of fluid flow = 6
      • 4. Data analysis = 7
      • Ⅲ. Results = 9
      • Ⅳ. Discussion = 18
      • Ⅴ. REFERENCES = 25
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